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CD - Assemblage des micro- et snoRNP

Offre de thèse

CD - Assemblage des micro- et snoRNP

Date limite de candidature

09-06-2026

Date de début de contrat

01-10-2026

Directeur de thèse

REDERSTORFF Mathieu

Encadrement

L'EAD a un long historique d'accueil de doctorants, et ainsi une grande expérience dans l'encadrement de tels projets et de formation pour et par la recherche. Par ailleurs, l'EAD est composée en majorité d'enseignants-chercheurs, qui côtoient la majorité des doctorants dès leur entrée en licence, et dont les qualités pédagogiques sont reconnues. Il s'agit donc d'un environnement optimal pour le/la doctorant(e) et la progression du projet. Les bonnes compréhension et appropriation du sujet seront possibles grâce à une veille bibliographique constante tout au long de la thèse, et la participation à des congrès. Le/la doctorante sera en outre systématiquement associé(e) à la réflexion afférente aux nouvelles expériences et protocoles à développer, notamment au cours de réunions hebdomadaires avec ses encadrants et les personnes impliquées dans le projet. Le/la doctorant(e) sera formée en interne à l'utilisation des appareils indispensables à la progression du projet, ainsi qu'à la maîtrise des différents protocoles utilisés en routine au laboratoire. Elle pourra par ailleurs bénéficier de courts séjours auprès de certains de nos collaborateurs. Les résultats de le/la doctorant(e) seront présentés lors de congrès thématiques (RNA meeting, SifrARN) et à l'occasion de réunions au sein de l'EAD et des consortiums ANR.

Type de contrat

Concours pour un contrat doctoral

école doctorale

BioSE - Biologie Santé Environnement

équipe

Equipe 1 : ARN, RNP (RNA/P)

contexte

Les particules ribonucléoprotéiques non-codantes, ou ncRNP, composées généralement d'un ARN non-codant et de plusieurs protéines, constituent les complexes macromoléculaires cellulaires parmi les plus complexes. Ainsi, leur assemblage dans la cellule correspond à un processus essentiel, mettant en jeu d'innombrables chaperonnes et cofacteurs dédiés, permettant d'assurer le bon repliement tridimensionnel des partenaires protéiques et l'association des protéines entre-elles, ou des protéines à l'ARN, au sein d'un environnement cytoplasmique très complexe. L'un de ces facteurs de biogenèse essentiels, le complexe R2TP, cofacteur de la chaperonne HSP90, joue ainsi un rôle crucial dans l'assemblage et la maturation de nombreuses particules protéiques ou ribonucléoprotéiques, telles que les ARN polymérases, les snRNP U4 et U5 (small nuclear RNP), la télomérase ou encore les snoRNP (small nucleolar RNP) [1–6]. Le complexe R2TP, très conservé au cours de l'évolution, est constitué d'un hétéro-dimère des protéines PIH1D1 et RPAP3, et d'un hétéro-hexamère des ATPases AAA+ RUVBL1 et RUVBL2 [6]. Chez l'humain, le R2TP s'associe avec des protéines supplémentaires, formant alors le PAQosome pour « Particle for the Arrangement of Quaternary Structures » [7]. Au sein du R2TP, la protéine RPAP3 régule l'activité ATPasique de HSP90 avec l'aide de PIH1D1 et joue également un rôle structural en interagissant de façon stable avec toutes les protéines du complexe [8]. La reconnaissance des clients peut se faire de diverses manières, soit directement, via PIHD1 ou RPAP3, soit via des cofacteurs additionnels, tels que NOPCHAP1, ZNHIT6 ou le dimère NUFIP1 :ZNHIT3 pour ce qui concerne les snoRNPsà boîtes C/D. Les snoRNPs, retrouvées chez les Archaea et les eucaryotes, font partie des plus anciennes ncRNPs connues [9]. Il existe deux grandes familles de snoRNPs, à boîtes H/ACA et à boîtes C/D, qui guident les modifications, pseudourydilations et 2'-O-méthylations, respectivement, d'autres ARN cibles, en particulier les ARN ribosomiques. D'autres sont impliquées plutôt dans le clivage du pré-ARN ribosomique, comme la snoRNP à boîtes C/D U3, qui nous intéressera dans ce projet. Les snoRNP à boîtes C/D, comme leur nom l'indique, présentent généralement 2 paires de boîtes conservées C/D et C'/D', essentielles à la formation de la snoRNP mature. Les snoRNP à boîtes C/D matures sont constituées de 4 protéines cœur, SNU13, qui s'associe aux boîtes C/D, la fibrillarine (FBL), qui porte l'activité de 2'-O-methylation, et les protéines nucléolaires NOP56 et NOP58. L'hétéro-dimère NOP56 et NOP58 se lie à SNU13 et à la fibrillarine, ainsi qu'à l'ARN, pour constituer une particule pseudo-symétrique, avec deux centres catalytiques au niveau de chaque paire de boîtes, permettant, avec le snoARN servant de guide par appariement avec la ou les cibles, la spécificité de la réaction. A partir d'un criblage par double-hybride réalisé chez la levure S. cerevisiae, visant à identifier de nouvelles protéines clientes du système HSP90/R2TP, nous avons identifié une nouvelle interaction directe entre la protéine TRBP, l'un des cofacteurs de la RNAse Dicer, et la protéine RPAP3 [16]. De plus, de façon remarquable, nous avons montré que cette nouvelle interaction entre TRBP et RPAP3 était mutuellement exclusive de l'interaction entre TRBP et Dicer, et nous avons résolu la structure 3D du complexe par diffraction des rayons X à une résolution de 1.5 Å. En outre, nous avons également montré au cours d'expériences de co-immunoprécipitation, que TRBP était associée à l'ensemble du complexe R2TP, et qu'elle était déstabilisée en présence d'inhibiteurs de HSP90 [16]. Dicer et TRBP sont deux protéines impliquées, entre autres, dans la maturation des micro-ARN (miARN) et le chargement d'un des brins du duplexe de miARN mature sur une protéine de la famille Argonaute (Ago) au sein du complexe effecteur de l'ARN interférence (complexe RISC), qui joue un rôle essentiel dans la régulation de l'expression des gènes. Ce processus est notamment stimulé par les chaperonnes HSC70/HSP90 [17–20]. En outre, de manière très intéressante, nos collaborateurs au sein d'un consortium ANR (ANR YMCR) viennent de mettre en évidence grâce à une expérience de co-immunoprécipitation d'ARN, que plusieurs ARN messagers (ARNm) étaient associés aux protéines RUBVL1 et RPAP3 [21]. Parmi ces ARNm, plusieurs correspondent à des protéines clientes connues du R2TP, tandis que d'autres constituent des observations inédites. Parmi ces dernières, on trouve notamment les ARNm des 4 protéines Ago. Ceci concorde avec des observations récentes d'assemblages de complexes multiprotéiques se déroulant en cours de traduction [22] et pourrait suggérer des évènements co-traductionnels dans l'assemblage du complexe RISC, impliquant le R2TP.

spécialité

Sciences de la Vie et de la Santé - BioSE

laboratoire

IMoPA - Ingénierie Moléculaire et Physiopathologie Articulaire

Mots clés

snoRNP U3, complexe R2TP, RPAP3, TRBP, Complexe RISC

Détail de l'offre

Les particules ribonucléoprotéiques non-codantes, composées généralement d'un ARN non-codant et de protéines, constituent des systèmes macromoléculaires complexes. Leur assemblage dans la cellule correspond à un processus essentiel, mettant en jeu d'innombrables cofacteurs, permettant d'assurer le repliement tridimensionnel des partenaires et leur association. L'un de ces cofacteurs essentiels, le complexe R2TP, joue un rôle crucial dans l'assemblage et la maturation de nombreuses particules ribonucléoprotéiques, telles que les snoRNP (small nucleolar RNP). Bien que notre compréhension de l'assemblage des snoRNPs a progressé au cours des dernières années, de nombreuses questions demeurent en suspens, notamment concernant les mécanismes de remodelage mis en jeu par le complexe R2TP et ses cofacteurs, et leur chronologie, pour lesquels des données moléculaires et structurales précises font toujours défaut. Dans le cadre de ce projet, nous tenterons de décortiquer la séquentialité des évènements prenant place entre les différents partenaires au cours de l'assemblage des snoRNPs à boîtes C/D, en particulier la snoRNP U3, par des approches in vivo et in vitro, afin de mieux comprendre l'implication de chacun de ces partenaires dans le processus, et la chronologie aussi précise que possible de leur associations et dissociations. Nous tenterons également de déterminer si des événements co-traductionnels prennent place lors de l'assemblage des miRNPs, toujours en relation avec le R2TP.

Keywords

U3 snoRNP, R2TP complex, RPAP3, TRBP, RISC complex

Subject details

Non-coding ribonucleoprotein particles, generally composed of a non-coding RNA associated to one or more proteins, constitute amongst the most complex macromolecular systems. Their assembly within the cell is an essential process involving numerous cofactors, ensuring the three-dimensional folding of the partners and their association with each other. One of these essential cofactors, the R2TP complex, plays a crucial role in the assembly and maturation of many ribonucleoprotein particles, such as small nucleolar RNPs (snoRNPs). Although our understanding of snoRNP assembly has progressed in recent years, many questions remain unanswered, particularly regarding the remodeling mechanisms involved by the R2TP complex and its cofactors, and their timing, for which precise molecular and structural data are still lacking. In this project, we will decipher the sequence of events occurring between the different partners during the assembly of C/D box snoRNPs, focusing on the U3 snoRNP, using in vivo and in vitro approaches. This aims to better understand the involvement of each partner in the process and to establish the most precise chronology of their associations and dissociations. We will also attempt to determine whether co-translational events occur during the assembly of miRNPs, in relation to the R2TP, which was never studied before.

Profil du candidat

Le/la candidat(e) devra avoir de bonnes connaissances fondamentales en biologie moléculaire et cellulaire, la maîtrise de la biologie des ARN en particulier sera un plus.
Stages pratiques en biologie moléculaire et cellulaire, maîtrise des techniques de base de culture cellulaire, et de biologie moléculaire: RT-PCR; Western-blot; extraction, précipitation et dosage des ARN et des protéines; des bases en manipulations des levures, en microscopie et en spectrométrie de masse seraient un plus.

Candidate profile

The candidate should have a strong scientific background in cellular and molecular biology; Knowledge in RNA biology would be appreciated;
The candidate should have been involved in previous practical internships in molecular biology, and familiar with basic molecular and cellular biology techniques: cell culture; RT-PCR; Western-blotting; extraction, purification and quantification of RNA and proteins;
Yeast manipulation, microscopy and mass spectrometry skills would be appreciated.

Référence biblio

1. Machado-Pinilla R et al. https://doi.org/10.1261/rna.034942.112; 2. Bizarro J et al. https://doi.org/10.1083/jcb.201404160; 3. Bizarro J et al. https://doi.org/10.1093/nar/gkv809; 4. Malinová A et al. https://doi.org/10.1083/jcb.201701165; 5. Boulon S et al. https://doi.org/10.1016/j.molcel.2010.08.023; 6. Boulon S et al. https://doi.org/10.1083/jcb.200708110; 7. Houry WA et al. https://doi.org/10.1016/j.tibs.2017.11.001; 8. Henri J et al. https://doi.org/10.1016/j.str.2018.06.002; 9. Dupuis-Sandoval F et al. https://doi.org/10.1002/wrna.1284; 10. Marmier-Gourrier N et al. https://doi: 10.1261/rna.2130503; 11. Rothé B et al. https://doi.org/10.1093/nar/gkt1091; 12. McKeegan KS et al. https://doi.org/10.1128/MCB.00752-09; 13. Paul A et al. https://doi.org/10.1261/rna.067967.118; 14. Abel Y et al. https://doi.org/10.1093/nar/gkaa1226; 15. Rothé B et al. https://doi.org/10.1093/nar/gku612; 16. Abel Y et al. https://doi.org/10.1093/nar/gkac086; 17. Miyoshi T et al. https://doi.org/10.1038/nsmb.1875; 18. Iki T et al. https://doi.org/10.1016/j.molcel.2010.05.014; 19. Johnston M et al. https://doi.org/10.1091/mbc.E09-10-0885; 20. Pare JM et al. https://doi.org/10.1091/mbc.E12-12-0892; 21. Philippe M et al. https://doi.org/10.1038/s41467-026-68687-8; 22. Shiber A et al. https://doi.org/10.1038/s41586-018-0462-y; 23. Sarnowski CP et al. https://doi.org/10.1016/j.str.2022.03.003; 24. Steigenberger B et al. https://doi.org/10.1021/acscentsci.9b00416; 25. Kramer K et al. https://doi.org/10.1038/nmeth.3092; 26. Watkins NJ et al. https://doi: 10.1016/s0092-8674(00)00137-9; 27. Assimon VA et al. https://doi.org/10.1021/acschembio.8b00904; 28. Plassart L et al. https://doi.org/10.7554/eLife.61254; 29. Zhong ED et al. https://doi.org/10.1038/s41592-020-01049-4; 30. Tebo AG et al. https://doi.org/10.1038/s41467-019-10855-0; 31. Abramson J et al. https://doi.org/10.1038/s41586-024-07487-w; 32. Clerget G et al. https://doi.org/10.1093/nar/gkaa066; 33. Rothé B et al. https://doi.org/10.1093/nar/gkx424; 34. Magalska A et al. https://doi.org/10.1016/j.devcel.2014.09.001; 35. Maurizy C et al. https://doi.org/10.1038/s41467-018-04431-1; 36. Tebo AG et al. https://doi.org/10.1038/s41589-020-0611-0; 37. Steigenberger B et al. https://doi.org/10.1021/jasms.9b00085; 38. Santo PE et al. https://doi.org/10.1038/s41467-026-69157-x; 39. Henri J et al. https://doi.org/10.1016/j.str.2018.06.002