Offre de thèse
CD - La double-vie des enzymes du métabolisme des monocarbones : un nouveau lien entre métabolisme et régulation de l'ARN dans le carcinome hépatocellulaire ?
Date limite de candidature
09-06-2026
Date de début de contrat
01-10-2026
Directeur de thèse
DREUMONT Natacha
Encadrement
L'encadrement repose sur un suivi hebdomadaire individualisé et renforcé. Le/la doctorant.e est également intégré.e aux instances collectives (réunions d'unité, séminaires, Journal Club hebdomadaire). L'unité mise sur la pluridisciplinarité en conviant techniciens et collaborateurs extérieurs aux réunions de projet pour assurer une cohérence globale. Dès l'arrivée, une base de veille bibliographique est fournie. Le/la doctorant.e doit présenter son sujet à l'équipe pour valider sa compréhension. Toute évolution du projet est discutée avec lui pour garantir la cohérence et la faisabilité dans le temps imparti. Le/la doctorant.e est formé.e aux techniques de base (RT-qPCR, Western Blot, culture cellulaire) par les techniciens/ingénieurs. Les techniques spécialisées (ex: RIP) sont transmises directement par l'encadrante. L'objectif est l'acquisition progressive de l'autonomie sous supervision. Le/la doctorant.e participe au Journal Club (en anglais), présente ses travaux aux séminaires de l'ED BioSe et à au moins un congrès international. Il/elle sera également invité.e à participer à des workshops pertinents pour son sujet de thèse, et à toute manifestation additionnelle (concours 'Ma thèse en 180 secondes, semaine de la recherche, fête de la science etc.). Les encadrants s'engagent à mettre à disposition du/de la doctorant.e tous les outils (financiers, méthodologiques, ressources bibliographiques…) pour s'assurer de son plein épanouissement au cours des 3 années de préparation de sa thèse. Les réunions régulières permettent également de vérifier le bien-être personnel du/de la doctorant.e. Les encadrants veillent à ce que l'encadrement soit bienveillant et encourageant pour l'étudiant.e. L'accompagnement dépendra du projet professionnel envisagé : i) intégration dans les échanges/réunions/séminaires organisés par le laboratoire permettant de rencontrer des enseignants-chercheurs, chercheurs EPST, ii) participation à des congrès en particulier en 2ème et 3ème année de thèse, afin de rencontrer les experts du domaine, (iii) rencontre de professionnels du domaine public ou privé dans les séminaires organisés dans le cadre du Master Ingéniérie de la Santé (N. Dreumont est responsable du M1 et de l'UE d'insertion professionnelle qui fait intervenir de nombreux professionnels de l'académique ou du privé), iv) soutien des co-encadrants pour assurer une charge d'enseignement au sein de l'UL pour acquérir une expérience pédagogique si une carrière d'enseignant chercheur est envisagée, v) aide à la recherche d'un stage post-doctoral ultérieur.
Type de contrat
école doctorale
équipe
contexte
Le carcinome hépatocellulaire (CHC) représente 90 % des cancers primaires du foie. Il est la sixième cause de cancer dans le monde et la troisième cause de mortalité par cancer [1]. Il se développe à partir des hépatocytes, le plus souvent lors de la progression d'une maladie hépatique chronique vers la cirrhose, plus rarement dans un foie sain. Le CHC est principalement causé par une infection virale (virus de l'hépatite B ou C), suivie d'autres étiologies telles que la consommation excessive d'alcool ou la surconsommation d'acides gras et d'aliments sucrés (MASH pour stéatohépatite associée à un dysfonctionnement métabolique, [2]). Malgré les progrès thérapeutiques, le taux de survie à 5 ans reste inférieur à 20 %. L'Organisation mondiale de la santé prévoit que d'ici 2030, plus d'un million de personnes mourront d'un cancer du foie. En France, l'incidence annuelle en 2018 était de 12,5/100 000 chez les hommes et de 2,5/100 000 chez les femmes (rapport InVS 2020 : http://lesdonnees.e-cancer.fr/). L'incidence continue d'augmenter, non seulement en raison de l'hépatite virale, mais aussi, de plus en plus, en raison de la MASH [3]. A moins que le patient ne fasse l'objet d'un suivi médical régulier (en cas d'exposition à des facteurs de risque), le CHC est généralement diagnostiqué tardivement. Malgré le développement de nouveaux traitements systémiques (comme les immunothérapies), la complexité moléculaire et le fort degré de diversité du CHC rendent la réponse aux différents traitements variables. Une meilleure compréhension moléculaire du CHC est donc nécessaire au développement de nouvelles approches thérapeutiques et diagnostiques. Une caractéristique du cancer est la capacité des cellules à la reprogrammation métabolique, entrainant la prolifération et la tumorigenèse. En plus de changements dans le métabolisme glucidique, des altérations du métabolisme des monocarbones (M1C), qui couple le cycle des folates à celui de la méthionine ont été observées dans le CHC [4]. Chez les mammifères, le folate et la méthionine sont respectivement convertis en tétrahydrofolate (THF) et en S-adénosylméthionine (SAM) et sont essentiels à de multiples réactions, telles que la synthèse des purines et des pyrimidines, le statut redox, la régulation épigénétique et l'homéostasie des acides aminés. Le foie peut être considéré comme « l'usine à SAM » de l'organisme. En effet, la plupart des réactions de transméthylation s'y produisent, tout comme la moitié du métabolisme de la méthionine. La plupart des enzymes impliquées dans le M1C sont surexprimées ou sous-exprimées dans le CHC, ce qui souligne son importance. Cependant, les mécanismes sous-jacents sont encore inconnus, à l'exception des gènes MAT1A et MAT2A, pour lesquels plusieurs mécanismes de régulation ont été découverts. L'un d'entre eux est la régulation post-transcriptionnelle des ARNm MAT1A et MAT2A par des protéines de liaison à l'ARN (RBP) telles que ELAVL1 et hnRNPD [5, 6]. Les travaux de thèse d'A. Doudou Tellai ont également permis d'identifier une autre RBP impliquée, hnRNPC. Elle semble jouer un rôle majeur, ainsi que ELAVL1, dans la régulation post-transcriptionnelle de nombreux ARNm du M1C. Les RBP participent à la formation des complexes RNP (ribonucléoprotéines) en se liant aux ARN via des domaines protéiques bien définis tels que le RRM (motif de reconnaissance de l'ARN), le domaine KH (homologie hnRNP K) ou le domaine hélicase DEAD-box [7]. Les RBP modulent les différentes étapes de maturation de l'ARNm et favorisent la structuration des ARN non codants tels que les snoARN et les ARNt [7]. Leur rôle est donc varié et essentiel au maintien de l'expression génique. Lors de la maturation de l'ARNm, de nombreuses RBP peuvent se lier à des sites de liaison spécifiques: régions 5'- ou 3'-UTR (régions non traduites), qui régulent l'efficacité de la traduction ou la stabilité de l'ARNm, au niveau des sites d'épissage (régulant l'épissage ou, plus tard, la stabilité), au niveau de séquences spécifiques riches en AU ou AG (régulant l'épissage, la stabilité ou l'export), etc. Les RBP sont impliquées dans la régulation de l'expression génique et, par conséquent, dans de nombreux processus physiologiques et pathologiques. Leur expression et/ou leur localisation subcellulaire sont très souvent altérées dans de nombreux types de cancer, entraînant une dérégulation des étapes qu'elles contrôlent et une expression altérée de leurs gènes cibles [8, 9]. Ces dernières années, des efforts importants ont été déployés pour analyser à grande échelle l'interactome ARN-protéine. Un peu moins de 1 000 protéines ont été identifiées, dont seulement la moitié contiennent des domaines classiques de liaison à l'ARN (Hentze et al., 2018). Pour l'autre moitié, les protéines identifiées ne contiennent pas les domaines de liaison décrits ci-dessus, et une centaine d'entre elles n'ont aucune fonction connue liée à l'ARN (Hentze et al., 2018). Parmi celles-ci figurent des enzymes du métabolisme intermédiaire et du M1C, ce qui corrobore certains résultats obtenus dans les années 1990 sur la thymidilate synthase [10]. Il reste cependant à démontrer que les enzymes identifiées peuvent lier les ARNm dans le foie (les études ayant été réalisées dans des HEK-293). L'activité de liaison à l'ARN de plusieurs enzymes candidates du M1C dans le CHC n'a pas encore été confirmée, et les conséquences fonctionnelles de ces interactions restent inconnues. Démontrer que ces enzymes se lient à des ARNm spécifiques et les régulent ouvrirait un nouvel axe de recherche à l'interface entre le métabolisme et la biologie de l'ARN dans le CHC.spécialité
Sciences de la Vie et de la Santé - BioSElaboratoire
NGERE - Nutrition-Génétique et Exposition aux Risques Environnementaux
Mots clés
protéines de liaison aux ARN, enzymes, hépatocarcinome, RNA processing
Détail de l'offre
Le carcinome hépatocellulaire (CHC) est la forme la plus fréquente de cancer primitif du foie et constitue l'une des principales causes de mortalité liée au cancer dans le monde. Son incidence augmente, notamment en raison de la prévalence croissante des maladies métaboliques hépatiques telles que la stéatohépatite associée à un dysfonctionnement métabolique (MASH). Le foie étant un organe central du métabolisme monocarboné, les altérations de ce réseau métabolique jouent un rôle clé dans la tumorigenèse hépatique. Ce métabolisme contrôle notamment la production de S-adénosylméthionine, principal donneur de groupements méthyle impliqué dans la régulation épigénétique.
Des études récentes ont révélé que certaines enzymes métaboliques possèdent des fonctions non canoniques indépendantes de leur activité catalytique, notamment la capacité de se lier directement aux ARN. Ces fonctions dites « moonlighting » représentent un nouveau paradigme reliant directement l'état métabolique cellulaire à la régulation post-transcriptionnelle de l'expression génique. Cependant, le rôle des enzymes du métabolisme des monocarbones comme protéines liant l'ARN dans le CHC reste largement inexploré.
Ce projet vise à identifier et caractériser les enzymes du métabolisme des monocarbones dans la régulation post-transcriptionnelle au cours du CHC. Des approches combinant biologie moléculaire, transcriptomique (RNA-seq), et analyses des interactions ARN-protéines seront utilisées dans des lignées cellulaires de CHC et un modèle murin de carcinogenèse hépatique. Ces travaux permettront d'identifier les ARN cibles, de caractériser les réseaux de régulation impliqués et de déterminer leur rôle fonctionnel dans la progression tumorale.
Ce projet apportera de nouvelles connaissances fondamentales sur les interactions entre métabolisme et régulation de l'expression génique dans le cancer du foie. À terme, ces résultats pourraient conduire à l'identification de nouvelles cibles thérapeutiques dans le carcinome hépatocellulaire.
Keywords
RNA-binding proteins, enzymes, hepatocarcinoma, RNA processing
Subject details
Hepatocellular carcinoma (HCC) is the most common primary liver cancer and a leading cause of cancer-related mortality worldwide. Its incidence is rising, largely due to the increasing prevalence of metabolic liver diseases such as metabolic dysfunction-associated steatohepatitis (MASH). As the liver is a central organ in one-carbon metabolism, alterations in this metabolic network play a critical role in liver tumorigenesis. One-carbon metabolism regulates the production of S-adenosylmethionine, the main cellular methyl donor, which is essential for epigenetic regulation. Recent studies have shown that some metabolic enzymes exhibit non-canonical (“moonlighting”) functions independent of their catalytic activity, including the ability to bind RNA and regulate its stability, or translation directly. These “moonlighting” functions represent a novel paradigm linking cellular metabolism directly to post-transcriptional gene regulation. However, the role of one-carbon metabolism enzymes as RNA-binding proteins in HCC remains largely unexplored. This project aims to identify and characterize one-carbon metabolism enzymes involved in post-transcriptional regulation during HCC progression. A combination of molecular biology, transcriptomics (RNA-seq), and RNA–protein interaction analyses will be performed using HCC cell lines and a mouse model of liver carcinogenesis. These approaches will allow the identification of RNA targets, characterization of regulatory networks, and determination of their functional role in tumor progression. This project will provide fundamental insights into the interplay between metabolism and gene expression regulation in liver cancer. Ultimately, these findings may lead to the identification of new therapeutic targets for hepatocellular carcinoma.
Profil du candidat
Profil académique
Le(la) candidat(e) devra présenter :
• Une solide formation en biologie moléculaire et cellulaire
• De bonnes connaissances en biochimie enzymatique et/ou en régulation de l'expression génique
• Un intérêt marqué pour les thématiques à l'interface métabolisme–biologie de l'ARN–cancérologie
Compétences techniques souhaitées
Des compétences expérimentales dans une ou plusieurs des techniques suivantes seront valorisées :
• Culture cellulaire (idéalement lignées tumorales ou lignées L2)
• Extraction d'ARN, RT-qPCR
• Western blot, immunoprécipitation
• Transfection, siRNA
• Notions de bioinformatique (analyse d'expression différentielle, enrichissement fonctionnel)
Une expérience en techniques d'interaction ARN–protéine (RIP, CLIP, EMSA) constituerait un atout, mais une formation complète sera assurée au laboratoire.
Compétences transversales
Le(la) candidat(e) devra démontrer :
• Rigueur scientifique et esprit critique
• Capacité d'organisation et d'autonomie progressive
• Aptitude au travail en équipe dans un environnement pluridisciplinaire
• Bonnes capacités de communication orale et écrite
• Maîtrise de l'anglais scientifique (lecture d'articles, présentation en congrès)
Une forte motivation pour s'investir dans un projet ambitieux et innovant, à fort potentiel conceptuel et translationnel dans le domaine du carcinome hépatocellulaire, est essentielle.
Candidate profile
Academic profile
The candidate should demonstrate:
• A strong background in molecular and cellular biology
• Good knowledge of enzymatic biochemistry and/or gene expression regulation
• A strong interest in research at the interface of metabolism, RNA biology, and cancer
Desired technical skills
Experimental experience in one or more of the following techniques will be considered an asset:
• Cell culture (ideally tumor-derived cell lines)
• RNA extraction, RT-qPCR
• Western blotting, immunoprecipitation
• Transfection, siRNA approaches
• Basic knowledge of bioinformatics (differential expression analysis, functional enrichment analysis)
Experience in RNA–protein interaction techniques (RIP, CLIP, EMSA) would be an advantage; however, full training will be provided within the laboratory.
Transferable skills
The candidate should demonstrate:
• Scientific rigor and critical thinking
• Organizational skills and the ability to progressively develop autonomy
• Ability to work effectively within a multidisciplinary team
Strong written and oral communication skills
Proficiency in scientific English (reading articles, presenting at conferences).
A strong motivation to engage in an ambitious and innovative project with high conceptual and translational potential in the field of hepatocellular carcinoma is essential.
Référence biblio
1 Bray, F., Laversanne, M., Sung, H., Ferlay, J., Siegel, R. L., Soerjomataram, I., et al. (2024) Global cancer statistics 2022: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries. CA. Cancer J. Clin. 74, 229–263 https://doi.org/10.3322/caac.21834
2 McGlynn, K. A., Petrick, J. L. and El-Serag, H. B. (2021) Epidemiology of Hepatocellular Carcinoma. Hepatol. Baltim. Md 73 Suppl 1, 4–13 https://doi.org/10.1002/hep.31288
3 Huang, D. Q., El-Serag, H. B. and Loomba, R. (2021) Global epidemiology of NAFLD-related HCC: trends, predictions, risk factors and prevention. Nat. Rev. Gastroenterol. Hepatol. 18, 223–238 https://doi.org/10.1038/s41575-020-00381-6
4 Michelotti, G. A., Machado, M. V. and Diehl, A. M. (2013) NAFLD, NASH and liver cancer. Nat. Rev. Gastroenterol. Hepatol. 10, 656–665 https://doi.org/10.1038/nrgastro.2013.183
5 Tellai, A. D., Haghnejad, V., Antoine, J., Khemiri Merouani, B., Bronowicki, J.-P. and Dreumont, N. (2025) The complex post-transcriptional regulation of genes coding for methionine adenosyl transferase: New insights for liver cancer. Biochimie S0300-9084(25)00082–3 https://doi.org/10.1016/j.biochi.2025.05.001
6 Vázquez-Chantada, M., Fernández-Ramos, D., Embade, N., Martínez-Lopez, N., Varela-Rey, M., Woodhoo, A., et al. (2010) HuR/methyl-HuR and AUF1 regulate the MAT expressed during liver proliferation, differentiation, and carcinogenesis. Gastroenterology 138, 1943–1953 https://doi.org/10.1053/j.gastro.2010.01.032
7 Corley, M., Burns, M. C. and Yeo, G. W. (2020) How RNA-Binding Proteins Interact with RNA: Molecules and Mechanisms. Mol. Cell 78, 9–29 https://doi.org/10.1016/j.molcel.2020.03.011
8 Gebauer, F., Schwarzl, T., Valcárcel, J. and Hentze, M. W. (2021) RNA-binding proteins in human genetic disease. Nat. Rev. Genet. 22, 185–198 https://doi.org/10.1038/s41576-020-00302-y
9 Wu, X. and Xu, L. (2022) The RNA-binding protein HuR in human cancer: A friend or foe? Adv. Drug Deliv. Rev. 184, 114179 https://doi.org/10.1016/j.addr.2022.114179
10 Chu, E., Voeller, D., Koeller, D. M., Drake, J. C., Takimoto, C. H., Maley, G. F., et al. (1993) Identification of an RNA binding site for human thymidylate synthase. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 90, 517–521 https://doi.org/10.1073/pnas.90.2.517
11 Baltz, A. G., Munschauer, M., Schwanhäusser, B., Vasile, A., Murakawa, Y., Schueler, M., et al. (2012) The mRNA-bound proteome and its global occupancy profile on protein-coding transcripts. Mol. Cell 46, 674–690 https://doi.org/10.1016/j.molcel.2012.05.021
12 Castello, A., Fischer, B., Eichelbaum, K., Horos, R., Beckmann, B. M., Strein, C., et al. (2012) Insights into RNA biology from an atlas of mammalian mRNA-binding proteins. Cell 149, 1393–1406 https://doi.org/10.1016/j.cell.2012.04.031
13 Song, L., Pan, Q.-L., Zhou, G.-F., Liu, S.-W., Zhu, B.-L., Lin, P.-J., et al. (2024) SHMT2 Mediates Small-Molecule-Induced Alleviation of Alzheimer Pathology Via the 5'UTR-dependent ADAM10 Translation Initiation. Adv. Sci. Weinh. Baden-Wurtt. Ger. 11, e2305260 https://doi.org/10.1002/advs.202305260
14 Liu, X., Reig, B., Nasrallah, I. M. and Stover, P. J. (2000) Human cytoplasmic serine hydroxymethyltransferase is an mRNA binding protein. Biochemistry 39, 11523–11531 https://doi.org/10.1021/bi000665d
15 Guiducci, G., Paone, A., Tramonti, A., Giardina, G., Rinaldo, S., Bouzidi, A., et al. (2019) The moonlighting RNA-binding activity of cytosolic serine hydroxymethyltransferase contributes to control compartmentalization of serine metabolism. Nucleic Acids Res. 47, 4240–4254 https://doi.org/10.1093/nar/gkz129
16 Caruso, S., Calatayud, A.-L., Pilet, J., La Bella, T., Rekik, S., Imbeaud, S., et al. (2019) Analysis of Liver Cancer Cell Lines Identifies Agents With Likely Efficacy Against Hepatocellular Carcinoma and Markers of Response. Gastroenterology 157, 760–776 https://doi.org/10.1053/j.gastro.2019.05.001
17 Fujii, M., Shibazaki, Y., Wakamatsu, K., Honda, Y., Kawauchi, Y., Suzuki, K., et al. (2013) A murine model for non-alcoholic steatohepatitis showing evidence of association between diabetes and hepatocellular carcinoma. Med. Mol. Morphol. 46, 141–152 https://doi.org/10.1007/s00795-013-0016-1
18 Caudron-Herger, M., Jansen, R. E., Wassmer, E. and Diederichs, S. (2021) RBP2GO: a comprehensive pan-species database on RNA-binding proteins, their interactions and functions. Nucleic Acids Res. 49, D425–D436 https://doi.org/10.1093/nar/gkaa1040
19 Fornari, F., Giovannini, C., Piscaglia, F. and Gramantieri, L. (2022) Animal Models of Hepatocellular Carcinoma: Current Applications in Clinical Research. J. Hepatocell. Carcinoma 9, 1263–1278 https://doi.org/10.2147/JHC.S347946
20 Dow, M., Pyke, R. M., Tsui, B. Y., Alexandrov, L. B., Nakagawa, H., Taniguchi, K., et al. (2018) Integrative genomic analysis of mouse and human hepatocellular carcinoma. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 115, E9879–E9888 https://doi.org/10.1073/pnas.1811029115

