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CD CPM - Identification de fonctions bactériennes dominants le transfert et la persistance de plasmides conjugatifs vecteurs d'antibiorésistance dans environnement

Offre de thèse

CD CPM - Identification de fonctions bactériennes dominants le transfert et la persistance de plasmides conjugatifs vecteurs d'antibiorésistance dans environnement

Date limite de candidature

02-06-2025

Date de début de contrat

01-11-2025

Directeur de thèse

MERLIN Christophe

Encadrement

Encadrement à 50/50 % (directeur/codirecteur), avec demande d'ACT

Type de contrat

Concours pour un contrat doctoral

école doctorale

BioSE - Biologie Santé Environnement

équipe

Microbiologie environnementale

contexte

Le travail de thèse sera exclusivement réalisé au sein de l'équipe 'Microbiologie Environnementale' du LCPME. Le laboratoire dispose de tous les équipements nécessaires à la microbiologie classique, l'implémentation de microcosmes, la biologie moléculaire, mais aussi la microscopie et la cytométrie.

spécialité

Sciences de la Vie et de la Santé - BioSE

laboratoire

LCPME - Laboratoire de Chimie Physique et Microbiologie pour les Matériaux et l'Environnement

Mots clés

Antibiorésistance, Plasmides conjugatifs, Environnement, Invasion biologique, Tn-seq

Détail de l'offre

Avec une implication directe dans 1,3 millions décès chaque année, l'antibiorésistance est devenue un enjeu majeur pour l'humanité. L'émergence et la dissémination de l'antibiorésistance reposent sur deux piliers, la sélection et l'enrichissement de variants résistants pendant l'antibiothérapie, et la diffusion de ces variants et de leurs gènes de résistance dans des communautés microbiennes naïves. La dissémination de l'antibiorésistance n'implique pas uniquement une transmission directe d'humain à humain, mais aussi la sphère environnementale qui agit comme une courroie de transmission en étant à la fois contaminée par des bactéries antibiorésistantes et source d'exposition pour l'homme et l'animal.

Les bactéries provenant du microbiote humain ou animal sont en général peu adaptées aux conditions environnementales mais sont susceptibles à transférer leurs gènes de résistance aux bactéries autochtones grâce à des mécanismes de transfert d'ADN, impliquant notamment des éléments génétiques mobiles tels que les plasmides conjugatifs. Les bactéries autochtones devenues résistantes, plus adaptées à l'environnement, peuvent alors former un réservoir environnemental de résistances, avec le risque d'une diffusion à l'humain ou l'animal en cas d'exposition. Ce projet vise à explorer la manière dont les gènes d'antibiorésistance envahissent les écosystèmes naturels, avec une attention particulière accordée à la part jouée par les plasmides conjugatifs dans la formation de réservoirs environnementaux d'antibiorésistance.

L'invasion de matrices environnementale par des plasmides vecteurs d'antibiorésistance relève d'un processus complexe qui combine plusieurs étapes, chacune avec sa propre dynamique et ses limites : introduction d'une bactérie antibiorésistante contaminante (pollution), interactions avec l'environnement (trophisme), persistance et interactions avec les bactéries locales (résistance/permissivité biotique), échanges d'ADN (via des plasmides) et impact sur la communauté naïve. Les gènes d'antibiorésistance transférés par les bactéries polluantes doivent s'établir aux dépens des cellules réceptrices (fardeau), et éventuellement être maintenus dans la population (expansion clonale ou nouveaux transferts). Le rôle (même fortuit) de chacune des fonctions codées par les plasmides dans chacune des étapes qui mènent à une invasion plasmidique reste à préciser.

Le projet sera organisé en trois parties interconnectées autour du plasmide naturel pB10, de la famille des plasmides IncP-1, ici choisi comme modèle. La première partie sera dédiée à l'élaboration d'une approche basée sur l'étiquetage fluorescent de bactéries permettant de visualiser chaque étape de l'invasion plasmidique d'une communauté bactérienne naturelle. Cette partie du projet mettra en œuvre du génie génétique et de l'imagerie de fluorescence combinée à de la cytométrie. La deuxième partie consistera à utiliser une approche de mutagenèse à haut débit de type Tn-seq pour identifier les fonctions bactériennes qui dominent le comportement du plasmide pB10 dans des matrices environnementales maintenues au laboratoire. Cette partie du travail impliquera implicitement de la biologie moléculaire et combinée à de l'analyse bioinformatique. Finalement, la troisième partie sera destinée à comprendre le rôle fin des fonctions bactériennes identifiées dans le processus d'invasion plasmidique, grâce aux outils d'imagerie développés dans la première partie.

Fondamentalement, la connaissance des étapes dans lesquelles ces fonctions interviennent permettra de mieux gérer la dissémination de l'antibiorésistance en conditions environnementales, par exemple en favorisant des effets barrières naturels.

Keywords

Antibiotic resistance, Conjugative plasmids, Environment, biological invasion, Tn-seq

Subject details

With a direct implication in 1.3 million deaths every year, antibiotic resistance has become a major issue for humankind. The emergence and spread of antibiotic resistance lies on two pillars: the selection and enrichment of resistant variants during antibiotic therapy, and the spread of these variants and their resistance genes in naïve microbial communities. The spread of antibiotic resistance involves not only a direct transmission from human to human, but also the environmental sphere, which acts as a transmission belt as being both, contaminated by antibiotic-resistant bacteria and a source of exposure for humans and animals. Bacteria from the human or animal microbiota are generally poorly adapted to environmental conditions, but are able to transfer their resistance genes to indigenous bacteria through DNA transfer mechanisms involving mobile genetic elements such as conjugative plasmids. Native bacteria that have become resistant are better adapted to the environment, and can form an environmental reservoir of resistance with the risk of spreading to humans or animals upon exposure. This project aims to explore the invasion of natural ecosystems by antibiotic resistance genes, with a special focus on the role played by conjugative plasmids in the formation of environmental reservoirs. The invasion of environmental matrices by antibiotic resistance and their plasmid vectors is a complex process that combines several steps, each with its own dynamics and limitations: introduction of a contaminating antibiotic-resistant bacterium (pollution), interactions with the environment (trophism), persistence and interactions with local bacteria (biotic resistance/permissiveness), DNA exchanges (via plasmids) and impact on the naïve community. Antibiotic resistance genes transferred by invading bacteria must establish themselves at the expense of recipient cells (burden), and eventually be maintained in the population (clonal expansion or new transfers). The role (even fortuitous) of each of the functions encoded by plasmids in each of the steps leading to plasmid invasion remains to be elucidated. The project will be organized in three interconnected parts centered on pB10, a natural conjugative plasmid belonging to the IncP-1 family, here chosen as model. The first part will be dedicated to the development of an approach based on the fluorescent labelling of bacteria for imaging each step of plasmid invasion of a natural bacterial community. This part of the project will involve the genetic engineering of bacteria and fluorescence imaging combined with cytometry. The second part will make use of a high-throughput Tn-seq mutagenesis approach to identify the bacterial functions that dominate the behavior of plasmid pB10 in environmental matrices maintained in laboratory conditions. This part of the work will involve molecular biology combined with bioinformatics analysis. Finally, the third part will aim at understanding the role of the bacterial functions identified in the plasmid invasion process, using the imaging tools developed in the first part. Basically, understanding of the steps in which these functions are involved will enable us to better manage the spread of antibiotic resistance under environmental conditions, for example by promoting natural barrier effects.

Profil du candidat

Le candidat retenu devra présenter une solide formation en microbiologie et biologie moléculaire, et démontrer un intérêt marqué pour la recherche environnementale. Une expérience en microbiologie environnementale et en bioinformatique sera considérée favorablement.

Candidate profile

The successful candidate should have a solid background in microbiology and molecular biology and demonstrate a strong interest in environmental research. Experience in environmental microbiology and bioinformatics will be favorably considered.

Référence biblio

Roy, D., Huguet, K. T., Grenier, F. & Burrus, V. IncC conjugative plasmids and SXT/R391 elements repair double-strand breaks caused by CRISPR–Cas during conjugation. Nucleic Acids Res 48, 8815–8827 (2020).

Rivard, N. et al. Surface exclusion of IncC conjugative plasmids and their relatives. PLOS Genetics (2024).

Champie, A. et al. Enabling low-cost and robust essentiality studies with high-throughput transposon mutagenesis (HTTM). PLOS ONE 18, e0283990 (2023).

Bellanger, X., Guilloteau, H., Breuil, B. & Merlin, C. Natural microbial communities supporting the transfer of the IncP-1β plasmid pB10 exhibit a higher initial content of plasmids from the same incompatibility group. Front. Microbiol. 5, (2014).

Bagra, K. et al. Environmental stress increases the invasion success of antimicrobial resistant bacteria in river microbial communities. Science of The Total Environment 904, 166661 (2023).--